荧光素酶报告基因(Luc)系统,依托荧光素为底物,巧妙检测萤火虫荧光素酶活性。此酶能催化荧光素氧化为oxyluciferin,过程中释放生物荧光,成为研究热点。
荧光素酶家族庞大,能催化多样底物发光,而哺乳细胞却无此内源酶。其中,细菌荧光素酶因热敏性在哺乳细胞研究中受限;萤火虫荧光素酶则凭借高灵敏度、宽检测范围(7-8个数量级),成为哺乳细胞研究的首选,尤其适合高通量筛选。更值得一提的是,新型萤火虫荧光素酶无需细胞裂解即可检测,大大简化了实验流程。而Renilla荧光素酶则以其产物能穿透生物膜的特性,展现出活细胞报告分子的潜力。
荧光素酶报告基因系统优势:
非放射性,安全环保;
反应迅速,超越CAT等传统报告基因;
灵敏度极高,是CAT的100倍;
半衰期短(哺乳细胞3小时,植物3.5小时),确保启动子变化即时反映为酶活性变化。
实验步骤如下:
生物信息学预测启动子转录因子结合位点。
PCR克隆靶启动子片段,插入pGL3-basic质粒。
筛选阳性克隆,测序验证后扩增提纯质粒。
同时准备转录因子质粒及空载对照质粒。
培养293等细胞至80%汇合度。
共转染报告基因质粒与转录因子表达质粒。
提取蛋白,进行荧光素酶检测。
加入底物,测定酶活性。
计算相对荧光强度,与空载对照比较。
具体操作流程(以萤火虫荧光素酶为例):
消化接种细胞,过夜培养。
细胞密度达70%时,共转染报告基因质粒等。
转染后24-36小时,洗涤细胞。
加入harvest buffer裂解细胞。
准备反应液(ATP buffer:luciferin buffer=1:3.6)。
细胞裂解液与反应液混合,迅速测定吸光值。
测定LacZ活性作为内标校正。
数据分析,作图展示。
注意事项:
1. 荧光素酶检测试剂需预平衡至15-25℃。
2. 样品冰上保存5小时或-70℃长期保存,避免反复冻融。
3. 冷样品信号强度略降,高活性样品需稀释。
4. 稀释样品应立即使用,或加BSA至2.5mg/ml稳定。
5. 部分荧光仪需稳定1-2秒后再检测。
6. 荧光素酶报告基因系统以其独特优势,在细胞信号转导、基因表达调控等领域发挥着重要作用,是研究细胞生物学不可或缺的工具。
荧光素酶家族庞大,能催化多样底物发光,而哺乳细胞却无此内源酶。其中,细菌荧光素酶因热敏性在哺乳细胞研究中受限;萤火虫荧光素酶则凭借高灵敏度、宽检测范围(7-8个数量级),成为哺乳细胞研究的首选,尤其适合高通量筛选。更值得一提的是,新型萤火虫荧光素酶无需细胞裂解即可检测,大大简化了实验流程。而Renilla荧光素酶则以其产物能穿透生物膜的特性,展现出活细胞报告分子的潜力。
荧光素酶报告基因系统优势:
非放射性,安全环保;
反应迅速,超越CAT等传统报告基因;
灵敏度极高,是CAT的100倍;
半衰期短(哺乳细胞3小时,植物3.5小时),确保启动子变化即时反映为酶活性变化。
实验步骤如下:
生物信息学预测启动子转录因子结合位点。
PCR克隆靶启动子片段,插入pGL3-basic质粒。
筛选阳性克隆,测序验证后扩增提纯质粒。
同时准备转录因子质粒及空载对照质粒。
培养293等细胞至80%汇合度。
共转染报告基因质粒与转录因子表达质粒。
提取蛋白,进行荧光素酶检测。
加入底物,测定酶活性。
计算相对荧光强度,与空载对照比较。
具体操作流程(以萤火虫荧光素酶为例):
消化接种细胞,过夜培养。
细胞密度达70%时,共转染报告基因质粒等。
转染后24-36小时,洗涤细胞。
加入harvest buffer裂解细胞。
准备反应液(ATP buffer:luciferin buffer=1:3.6)。
细胞裂解液与反应液混合,迅速测定吸光值。
测定LacZ活性作为内标校正。
数据分析,作图展示。
注意事项:
1. 荧光素酶检测试剂需预平衡至15-25℃。
2. 样品冰上保存5小时或-70℃长期保存,避免反复冻融。
3. 冷样品信号强度略降,高活性样品需稀释。
4. 稀释样品应立即使用,或加BSA至2.5mg/ml稳定。
5. 部分荧光仪需稳定1-2秒后再检测。
6. 荧光素酶报告基因系统以其独特优势,在细胞信号转导、基因表达调控等领域发挥着重要作用,是研究细胞生物学不可或缺的工具。